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凝膠電泳實驗的一些注意事項
更新時間:2015-04-21 點擊次數(shù):1682

影響電泳分離的主要因素:

1. 待分離生物大分子的性質(zhì):待分離生物大分子所帶的電荷、分子大小和性質(zhì)都會對電泳有明顯影響。一般來說,子帶的電荷量越大、直徑越小、形狀越接近球形,則其電泳遷移速度越快。 
2. 緩沖液的性質(zhì):緩沖液的pH值會影響待分離生物大分子的解離程度,從而對其帶電性質(zhì)產(chǎn)生影響,溶液pH值距離其等電點愈遠(yuǎn),其所帶凈電荷量就越大,電泳的速度也就越大,尤其對于蛋白質(zhì)等兩性分子,緩沖液pH還會影響到其電泳方向,當(dāng)緩沖液pH大于蛋白質(zhì)分子的等電點,蛋白質(zhì)分子帶負(fù)電荷,其電泳的方向是指向正極。為了保持電泳過程中待分離生物大分子的電荷以及緩沖液pH值的穩(wěn)定性,緩沖液通常要保持一定的離子強度,一般在0.02-0.2,離子強度過低,則緩沖能力差,但如果離子強度過高,會在待分離分子周圍形成較強的帶相反電荷的離子擴(kuò)散層(即離子氛),由于離子氛與待分離分子的移動方向相反,它們之間產(chǎn)生了靜電引力,因而引起電泳速度降低。另外緩沖液的粘度也會對電泳速度產(chǎn)生影響。 
3. 電場強度:電場強度(V/cm)是每厘米的電位降,也稱電位梯度。電場強度越大,電泳速度越快。但增大電場強度會引起通過介質(zhì)的電流強度增大,而造成電泳過程產(chǎn)生的熱量增大。電流在介質(zhì)中所做的功(W)為:W=I2.R.t式中:I為電流強度,R為電阻,t為電泳時間。 
  電流所作的功絕大部分都轉(zhuǎn)換為熱,因而引起介質(zhì)溫度升高,這會造成很多影響: 
1、 樣品和緩沖離子擴(kuò)散速度增加,引起樣品分離帶的加寬; 
2、 產(chǎn)生對流,引起待分離物的混合; 
3、 如果樣品對熱敏感,會引起蛋白變性; 
4、 引起介質(zhì)粘度降低、電阻下降等等。電泳中產(chǎn)生的熱通常是由中心向外周散發(fā)的,所以介質(zhì)中心溫度一般要高于外周,尤其是管狀電泳,由此引起中央部分介質(zhì)相對于外周部分粘度下降,摩擦系數(shù)減小,電泳遷移速度增大,由于中央部分的電泳速度比邊緣快,所以電泳分離帶通常呈弓型。降低電流強度,可以減小生熱,但會延長電泳時間,引起待分離生物大分子擴(kuò)散的增加而影響分離效果。所以電泳實驗中要選擇適當(dāng)?shù)碾妶鰪姸?,同時可以適當(dāng)冷卻降低溫度以獲得較好的分離效果。 
4. 電滲:液體在電場中,對于固體支持介質(zhì)的相對移動,稱為電滲現(xiàn)象。由于支持介質(zhì)表面可能會存在一些帶電基團(tuán),如濾紙表面通常有一些羧基,瓊脂可能會含有一些硫酸基,而玻璃表面通常有Si-OH基團(tuán)等等。這些基團(tuán)電離后會使支持介質(zhì)表面帶電,吸附一些帶相反電荷的離子,在電場的作用下向電極方向移動,形成介質(zhì)表面溶液的流動,這種現(xiàn)象就是電滲。在pH值高于3時,玻璃表面帶負(fù)電,吸附溶液中的正電離子,引起玻璃表面附近溶液層帶正電,在電場的作用下,向負(fù)極遷移,帶動電極液產(chǎn)生向負(fù)極的電滲流。如果電滲方向與待分離分子電泳方向相同,則加快電泳速度;如果相反,則降低電泳速度。 
5. 支持介質(zhì)的篩孔:支持介質(zhì)的篩孔大小對待分離生物大分子的電泳遷移速度有明顯的影響。在篩孔大的介質(zhì)中泳動速度快,反之,則泳動速度慢。

關(guān)于膠回收切膠的一點注意事項:

1. 電泳的buffer和gel都是新制的,切膠的臺子清理干凈,刀片洗凈滅菌,總之一句話就是保證切下的帶沒有外源dna污染。 
2. 切膠是要把整個目的片斷所在位置的膠全部回收。為了減少膠的體積,可以用相對比較薄的膠來做,只要夠點樣即可,也可采用薄而寬的梳子來跑膠。 
3. 關(guān)于防護(hù),在一般有機(jī)玻璃后就足夠了,戴上防護(hù)面具以保護(hù)眼睛,如果戴樹脂眼鏡就可以了。要是非常害怕紫外照射,或者對于膠有特殊要求,例如要求不含EB,可以采用點marker和帶刻度的尺子一起照相的方法來確定目的條帶在膠上的位置進(jìn)行切膠。 
4. 按照正常程序點marker跑膠,然后切下有marker的膠,EB染色,紫外燈下與帶刻度的尺子一起照相。由于要回收的帶與marker間的相對位置已知,根據(jù)尺子來衡量未染色膠上目的帶的位置即可。如果覺得很難判斷,可以直接在marker邊點少量的樣,這樣位置就容易確定了。

影響電泳實驗結(jié)果的其它一些因素:

瓊脂糖:不同廠家,不同批號的瓊脂糖,其雜質(zhì)含量不同,影響DNA的遷移及熒光背景的強度,應(yīng)有選擇地使用。 
凝膠的制備:凝膠中所加緩沖液應(yīng)與電泳槽中的相一致,溶化的凝膠應(yīng)及時倒入板中,避免倒入前凝固結(jié)塊.倒入板中的凝膠應(yīng)避免出現(xiàn)氣泡,以免影響電泳結(jié)果。
電泳緩沖液:為保持電泳所需的離子強度和pH,應(yīng)經(jīng)常更新電泳緩沖液。
樣品加入量:一般情況下,0.5cm寬的梳子可加0.5μg的DNA量,加樣量的多少依據(jù)加樣孔的大小及DNA中片段的數(shù)量和大小而定。當(dāng)加樣孔大時,樣品上樣量應(yīng)相應(yīng)加大,否則會造成條帶淺甚至辨認(rèn)不清;反之則應(yīng)適當(dāng)減少加樣量,但是上樣量過多會造成加樣孔超載,從而導(dǎo)致拖尾或彌散,對于較大的DNA此現(xiàn)象更明。 
DNA樣品中鹽濃度會影響DNA的遷移率,平行對照樣品應(yīng)使用同樣的緩沖條件以消除這種影響。 
DNA遷移率取決于瓊脂糖凝膠的濃度,遷移分子的形狀及大小.采用不同濃度的凝膠有可能分辯范圍廣泛的DNA分子,制備瓊脂糖凝膠可根據(jù)DNA分子的范圍來決定凝膠的濃度.小片段DNA的檢測應(yīng)采用聚丙烯酰胺凝膠電泳,以提高分辨率。

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